蛋白质印迹法 (免疫印迹试验) 即 Western Blot，其工作原理是经过 PAGE (根据分子大小) 分离的蛋白质样品，转移到固相载体 (例如**纤维素薄膜) 上，然后将目的蛋白与特异性抗体进行孵化。由于抗体只与目的蛋白结合，未结合的抗体被洗掉，只留下与目的蛋白结合的抗体。最后通过显影检测结合的抗体，条带灰度与蛋白量相对应，因此可以反映蛋白质的表达情况[1]。
图 1. Western blot 的流程图[2]
要想实验节奏稳，准备工作那可要妥妥的——缓冲液配制。小 M 在此总结了 WB 实验中所涉及的各类缓冲液的配方，拿走拿走别客气～
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表 1. Western blotting 各类缓冲液配方
默默问一句，看完这些配方，您倦了吗？疯狂计算，反复称量，您累了吗？小 M 且在这里为您献上 MCE 多种速溶颗粒产品 (可戳往期→让“速溶颗粒”解放你的双手)，不用犹豫，省时省力，您且受累收好呗！
配好了溶液，就该轮到把样品的蛋白分离出来了！那么样品处理该注意什么呢？
低温操作！低温操作！低温操作！重要的事说三遍。为最大限度保证蛋白原有结构，所有涉及蛋白的操作都需在冰上进行！
1. 细胞裂解液的制备。在冰上用预冷的 PBS 洗涤细胞。根据每 107 个细胞加 1 mL 裂解缓冲液的比例加入预冷的裂解缓冲液。细胞重悬液在 4 ℃ 下放置 5-10 分钟，期间剧烈震荡 3-4 次，每次 30 秒，实现充分裂解。放入离心机内，12,000 rpm 离心 13-15 分钟。将上清液转移到冰上预冷的离心管中，弃去沉淀。
如果是制备组织裂解液的话，解剖目标组织一定要迅速，建议多次离心去除杂质。
2. 蛋白样本制备。取少量裂解液，通过 BCA 法进行蛋白浓度测定。取出 50 μg 蛋白对应的溶液至离心管中，加入 1×SDS 上样缓冲液调平体积。将样本缓冲液中的细胞裂解液在 100 ℃ 下煮沸 5-10 分钟。
紧张又忙碌地制备完蛋白样品，然后就是上样和跑胶。(恰恰恰，跑个胶，先检查下作业呗！) 首先是根据蛋白大小选择合适的凝胶，参考下表 2。
然后将蛋白样品上样至 SDS-PAGE 凝胶孔中，记得在样品旁边的孔内点上 marker。细胞裂解液或组织匀浆的总蛋白上样量一般为 20-30 μg，电泳时长一般 1.5 小时，先用 80 V 跑 30分钟，使各样本处于同一水平，待 marker 开始分离后将电压调至 120 V 再跑 1小时。
表 2. 蛋白大小与推荐的凝胶百分比
顺利到了转膜这一步，已经快完成实验啦~ 转膜分为湿转和半干转两种，转膜时间应根据蛋白大小进行相应调整。
图 2. 转膜的物料顺序：阴极，海绵 (湿转需要)，滤纸，胶，PVDF 膜，滤纸，海绵 (湿转需要)，阳极[3]
一通操作猛如虎，一看结果想哭
。WB 结果有问题怎么办？别怕！万能的小 M 仍有对策！详情可戳→我就不信这个邪！打破 Western Blot玄学操作。