癌症-通路筛选:EMT 小包装抗体套装-技术前沿-资讯-生物在线

癌症-通路筛选:EMT 小包装抗体套装

作者:Cell Signaling Technology(CST) 2020-09-04T10:31 (访问量:4971)

细胞不受控制的生长和分裂会演化成癌症,这些细胞可以扩散到其他器官。因此,癌细胞如何生存、增殖、操纵其他类型的细胞以及对治疗的反应决定了疾病的结局和预后。


上皮-间质细胞转换 (EMT) 是探索癌症恶性化程度,肿瘤转移的重要事件之一,CST提供EMT抗体小包装抗体套装Epithelial-Mesenchymal Transition (EMT) Antibody Sampler Kit #9782T

 

产品包括

应用

反应性

Vimentin (D21H3) XP® Rabbit mAb 5741

WB, IHC, IF, F

H M R Mk

N-Cadherin (D4R1H) XP® Rabbit mAb 13116

WB, IP, IHC, IF

H M

Claudin-1 (D5H1D) XP® Rabbit mAb 13255

WB, IP, IHC

H Dg

β-Catenin (D10A8) XP® Rabbit mAb 8480

WB, IP, IHC, IF, F, ChIP

H M R Mk

ZO-1 (D7D12) Rabbit mAb 8193

WB, IP

H Mk

Snail (C15D3) Rabbit mAb 3879

WB, IP

H M R Mk

Slug (C19G7) Rabbit mAb 9585

WB, IP, IF,F

H M

ZEB1 (D80D3) Rabbit mAb 3396

WB,IP

H

E-Cadherin (24E10) Rabbit mAb 3195

WB,IHC,IF,F

H M

Anti-rabbit IgG, HRP-linked Antibody 7074

WB

 


上皮-间质细胞转换 (EMT) 是发育期间的重要过程,在此过程中上皮细胞获得间质成纤维细胞样特性,表现出胞内黏附减少和运动性增加。这是正常胚胎发育的关键特征,恶性上皮细胞肿瘤会利用此特征进行肿瘤扩散 (1-3)。这一严格调控的过程与大量细胞和分子活动相关。EMT 依赖于细胞黏附分子表达的减少。钙粘蛋白介导钙依赖性细胞间黏附,并在正常组织发育中起关键作用 (4)。E-钙粘蛋白被认为是许多上皮癌细胞侵袭和生长的活性抑制蛋白 (4-6)。近期研究表明,除了 E 钙粘蛋白丢失外,癌细胞的 N-钙粘蛋白表达上调。钙粘蛋白表达变化称为“钙粘蛋白转换”,E-钙粘蛋白表达下调是 EMT 的一个标志 (1)。紧密连接或紧密闭合蛋白可在上皮细胞和内皮细胞之间形成一个连续的液体屏障。紧密连接可调节细胞旁通透性并维持细胞极性,阻断顶端和基底外侧细胞表面之间跨膜蛋白的运动。紧密连接由密封蛋白和闭合蛋白组成,并可与细胞骨架连接 (7,8)。封闭区蛋白 ZO-1、2 和 3(也称 TJP 1、2 和 3)是外周膜接头蛋白,可将闭合蛋白和密封蛋白等连接跨膜蛋白结合到肌动蛋白细胞骨架 (9)。ZO-1 和 -2 对紧密连接形成和功能不可或缺 (10,11);ZO-1 和密封蛋白突变会诱导 EMT (12)。波形蛋白是间叶细胞的中间纤维,见于早期发育阶段。胞外刺激诱导的波形蛋白动态结构变化和空间重组,有助于协调不同的信号转导通路 (13)。β-catenin是 Wnt 信号转导通路的关键下游效应子 (14),与脊椎动物的两个重要生物进程有关:早期胚胎发育 (15) 和肿瘤发生 (16)。β-catenin还能激活 Slug。Slug (SNAI2) 是一种广泛表达的转录阻遏蛋白,也是锌指转录因子 Snail 家族的一员 (17)。与相关 Snail 蛋白一样,Slug 结合 E-钙粘蛋白启动子区来抑制发育期间的转录(18)。Slug 结合整合素启动子序列后,会抑制整合素表达、导致细胞黏附减少 (19)。在胚胎发育的 EMT 期间,E-钙粘蛋白表达会发生下调 (20)。ZEB 家族蛋白是包含锌指和同源盒结构域的转录因子。E-钙粘蛋白是 ZEB 蛋白所抑制的一个靶标蛋白 (1)。


参考文献:

  1. Aigner, K. et al. (2007) Oncogene 26, 6979-88.

  2. Peinado, H. et al. (2007) Nat Rev Cancer 7, 415-28.

  3. Moreno-Bueno, G. et al. (2008) Oncogene 27, 6958-69.

  4. Wheelock, M.J. and Johnson, K.R. (2003) Annu Rev Cell Dev Biol 19, 207-35.

  5. Christofori, G. (2003) EMBO J 22, 2318-23.

  6. Hazan, R.B. et al. (2004) Ann N Y Acad Sci 1014, 155-63.

  7. Shin, K. et al. (2006) Annu Rev Cell Dev Biol 22, 207-35.

  8. Oliveira, S.S. and Morgado-Díaz, J.A. (2007) Cell Mol Life Sci 64, 17-28.

  9. Matter, K. and Balda, M.S. (2007) J Cell Sci 120, 1505-11.

  10. Hernandez, S. et al. (2007) Exp Cell Res 313, 1533-47.

  11. Umeda, K. et al. (2006) Cell 126, 741-54.

  12. Reichert, M. et al. (2000) J Biol Chem 275, 9492-500.

  13. Helfand, B.T. et al. (2004) J Cell Sci 117, 133-41.

  14. Cadigan, K.M. and Nusse, R. (1997) Genes Dev. 11, 3286-3305.

  15. Wodarz, A. and Nusse, R. (1998) Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 14, 59-88.

  16. Polakis, P. (1999) Curr. Opin. Genet. Dev. 9, 15-21.

  17. Inukai, T. et al. (1999) Mol Cell 4, 343-52.

  18. Bolós, V. et al. (2003) J Cell Sci 116, 499-511.

  19. Turner, F.E. et al. (2006) J Biol Chem 281, 21321-31.

  20. Barrallo-Gimeno, A. and Nieto, M.A. (2005) Development 132, 3151-61.

 

 

 

 

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