革兰氏阳性菌质粒小量提取试剂盒

产品内容： 

        使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶体上的标签。溶液Ⅰ在使用前先加入 RNaseA（将试剂盒中提供的 RNaseA 全部加入） ，混匀，置于 2-8℃保存。如非指明，所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。

操作步骤：

1、取 1-5ml  细菌培养物，12000rpm离心 1min，尽量吸除上清（菌液较多时可以通过多次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中）。  

2、向留有菌体沉淀的离心管中加入 200ul  溶液Ⅰ(请先检查是否已加入 RNaseA）, 使用移液器或旋涡振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀。再向其中加入 50ul  溶菌酶，混匀。37℃水浴 30 min  以上（根据菌液量可适当加长水浴时间）。注意：如果菌块未彻底混匀，会影响裂解导致质粒提取量和纯度偏低。如不能确定为何种菌，请按阳性菌处理。  

3、向离心管中加入 250ul  溶液Ⅱ，温和地上下翻转 6-8  次使菌体充分裂解。注意：混匀一定要温和，以免污染基因组 DNA，此时菌液应变得清亮粘稠，作用时间不要超过 5 min，以免质粒受到破坏。  

4、向离心管中加入 350ul  溶液Ⅲ，立即温和地上下翻转 6-8 次，充分混匀，此时会出现白色絮状沉淀。 11000rpm离心 10 min  。注意：溶液Ⅲ加入后应立即混匀，避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀，可再次离心后取上清。  

5、将上一步所得上清液加入吸附柱中（吸附柱加入收集管中），室温放置 2min，12000rpm  离心 1min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中(  如果一次加不完，可分两次吸附)  。  

6、向吸附柱中加入 700ul  漂洗液(  使用前请先检查是否已加入无水乙醇)  ，12000rpm 离心 1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。  

7、向吸附柱中加入 500ul  漂洗液，12000rpm离心 1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。  

8、12000rpm 离心 2min，将吸附柱敞口置于室温或 50℃温箱放置数分钟，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，否则漂洗液中的乙醇会影响后续实验如酶切、PCR  等。  

9、将吸附柱放入一个干净的离心管中，向吸附膜中央悬空滴加 50-200ul  经65℃水浴预热的洗脱液，室温放置2min，12000rpm离心 1min，收集质粒DNA溶液。  

10、（可选）为了增加质粒的回收率，可将得到的洗脱液重新加入吸附柱中，室温放置2min， 12000rpm离心 1min。   

注意事项：   

1、使用前请先检查溶液Ⅱ和溶液Ⅲ是否出现混浊，如有混浊现象，可在 37℃水浴中加热几分钟，待溶液恢复澄清后再使用。  

2、洗脱缓冲液体积不应少于 50ul，体积过小影响回收效率；洗脱液的 pH  值对洗脱效率也有影响，若需要用水做洗脱液应保证其 pH值在 8.0 左右(  可用 NaOH  将水的 pH值调至此范围)  ，pH值低于 7.0 会降低洗脱效率。DNA产物应保存在-20 ℃，以防 DNA 降解。  

3、如果所提质粒为低拷贝质粒或大于 10kb 的大质粒，应加大菌体使用量，使用 5-10ml 过夜培养物，同时按照比例增加溶液Ⅰ、溶液Ⅱ和溶液Ⅲ的用量，吸附和洗脱时可以适当的延长时间，以增加提取效率。  

4、 DNA浓度及纯度检测：得到的质粒DNA纯度与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。得到的DNA可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为 1  相当于大约 50 μg/ml  双链DNA、40 μg/ml  单链DNA。OD260/OD280比值应为 1.7-1.9  ，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用去离子水，比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。

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